FARMACOLOGÍA DE PLANTAS MEDICINALES

Dra. Amelia Villar López
Dr. Moisés Mendocilla Risco
Universidad Nacional de Trujillo

INTRODUCCIÓN

Las plantas medicinales son el mayor recurso terapéutico usado por las medicinas tradicionales de muchos países y la Organización Mundial de la Salud apoya la incorporación de estos recursos en la Atención Primaria de la Salud. La FAO sostiene que los conocimientos de los pobladores indígenas “han contribuidos al descubrimiento de alrededor de las tres cuartas partes de los medicamentos de origen vegetal que se emplean ampliamente en el mundo desarrollado”. No hay que obligar a los enfermos a tratarse con medicamentos naturales, ellos deben elegir entre el tratamiento natural y el químico. Esto implica también que ha de difundirse la información sobre los medicamentos químicos y sus alternativas. Por lo tanto, hay que ser tan críticos con los medicamentos químicos como con las plantas medicinales.

La Farmacología es una ciencia que utiliza fundamentalmente la observación y la experimentación con el fin de analizar la acción de los principios activos provenientes de productos vegetales o sintéticos sobre los organismos vivos, recurriendo a las técnicas habituales de la física, química, fisiológica y clínica. El método experimental empleado en farmacología es un método hipotético deductivos cuyas etapas son:  a) la contrastación de un hecho, b) el surgimiento de una idea a partir de este hecho, c)a la vista de esta idea se razona, se imagina y se inicia una experiencia, d) de esta experiencia surgen nuevos fenómenos que es necesario  observar e interpretar, y así sucesivamente. La mente del investigador se encuentra siempre entre dos observaciones. El método experimental en medicina fue sistematizado por Claude Bernard, y sus concepciones están vigentes hasta el momento.

Siendo la Farmacología una ciencia cuantitativa que requiere una correcta dosificación de las sustancias activas aplicadas al paciente, es imprescindible realizar la valoración de éstas no sólo a nivel experimental, sino a nivel clínico, que constituye la farmacometría. Los métodos de valoración utilizados son de dos tipos: métodos químicofísicos y métodos biológicos los métodos Físico-químicos son los más exactos, y a ellos debe recurrirse siempre que sea posible. Los más importantes son: métodos espectrofotométricos (espectrofotometría de llama o emisión y espectrofotometría de absorción); étodo espectrofotofluorométricol; métodos cromatográficos (de  fase estacionaria sólida o líquida, y se fase móvil gaseosa o líquida incluyendo al de alta resolución); métodos de radioactividad y radioinmunoensayos (isótopos radioactivos); y otros como la refractometría, polarimetría, polarografía, Potenciaometría, volumetría gravimetría, etc.

Los métodos biológicos o bioensayos, se definen como la  determinación de la potencia de una agente físico, químico o biológico, mediante un indicador biológico. La principal desventaja de estos estudios es su falta de precisión, debido a la amplia variabilidad biológica. Bernard afirmaba “nunca ningún animal es absolutamente comparable a otro, y el mismo animal tampoco es comparable y si mismo si es examinado en tiempos diferentes”. Pero en cambio encierra las siguientes ventajas: 1) no es necesario conocer el principio activo, y así se conociera el principio activo 'no es necesario aclarar su constitución química; 2) el principio activo no necesita encontrarse en estado de pureza, 3) en algunas ocasiones, la sensibilidad de los bioensayos es muy superior a la de los métodos químicofísicos (vitamina B12, Acetilcolina en ganglios), 4) puede indicar cuál es el isómero activo o inactivo y permite valorar sustancias de estructura química muy semejante, pero que difieren extraordinariamente en su actividad biológica y que se pueden encontrar combinadas, como ocurre con los polipéptidos (angiotensina, bradicinina, oxitocina, etc.); 5) permiten valorar sustancias químicamente puras, pero muy inestables (acetilcolina); 6) en algunos casos puede ser el único método de valoración, ya que no existen métodos quimicofísicos adecuados; 7) la variabilidad viene expresada en términos de variación del efecto en cuanto a su intensidad o en cuanto a su duración con una misma dosis, o variación en la cantidad de la droga para producir el mismo efecto.

Para que la valoración biológica proporcione resultados útiles hay que tener en cuenta los siguientes postulados:

1)      Utilizar un número suficiente de animales, tanto para testigos, patrones y experimentales, determinando el número mínimo mediante el cálculo estadístico.

2)      Utilizar lotes de animales homogéneos (mismo peso, edad, sexo, alimentación, higiene, etc.) distribuyéndolos al azar (aleatoriamente) para lo que existen tablas especiales.

3)      La actividad del problema o muestra en estudio deberá determinarse por pruebas comparativas con el patrón de referencia y expresarse en términos de dicho patrón: este requerimiento es el más importante, ya que no se concibe una valoración biológica sin el empleo de un patrón de referencia o están dar. Se deben determinar las respuestas al preparado estándar y el problema, al mismo tiempo o con la menor variación de tiempo posible.

4)      Si la droga no produce muerte de los animales de experimentación, se debe recurrir al estudio cruzado.

5)      Debe procurarse que la curva que relacione la respuesta con la dosis sea una línea recta con poca pendiente.

6)      La respuesta obtenida debe estar íntimamente relacionada con el uso terapéutico del fármaco tanto como sea posible.

Según Burn "los métodos son buenos si son exactos, rápidos y sencillos; y son malos si son inexactos, lentos y requieren un largo aprendizaje o hábitos".

En Farmacología existe una gran variedad de métodos que se utilizan' en el estudio de plantas medicinales. Se puede mencionar dos clases importantes de estos: 1) en órgano o tejido aislado, denominados también estudios "in vitro", los que son trabajados en tejidos u órganos completos o en parte de ellos, que se toman, por lo general, de un animal recién muerto y se mantienen funcionando en soluciones de sales apropiadas, muy semejantes a las fisiológicas. Es importante seleccionar la composición de la sal de acuerdo al tipo de tejido, con !a finalidad de que éste pueda sobrevivir el mayor tiempo posible. También es importante airear la solución con gases compuestos, porque la continua aireación con oxígeno puro en una solución que contiene bicarbonato de sodio como buffer, puede originar la pérdida del dióxido de carbono y su conversión en una sola solución alcalina.

El tejido en estudio debe tratarse con mucho cuidado y delicadeza, sin estirar (pues podría elongarse) y sin manipularlo fuertemente. Los tejidos pueden ser sensibles a los metales especialmente al cobre y al mercurio, también se podría incluir al fierro. Las palancas para su sostenimiento deberían ser, de preferencia, de platino o tungsteno. El lavado también puede dañar al tejido cuando no se realiza con cuidado, sobretodo si se trata de tejido nervioso.

El control de la temperatura es otro factor muy importante para el funcionamiento del tejido. Los tejidos de anfibios son los que sobreviven por mayor tiempo a temperatura ambiente y pueden mantenerse en función sin uso de termostato. La temperatura a la que generalmente debe mantenerse el termostato es de 37°C, aunque podría requerirse de temperaturas específicas para determinados estudios; hay que tener en cuenta también que la sensibilidad a los fármacos o sustancias químicas se ve afectada fuertemente por la variación de la temperatura, así fuere una variación pequeña de 1°C, por lo tanto, se recomienda el uso de termostato. Es importante no agregar volúmenes de solución fría directamente al tejido, porque puede modificar ampliamente las respuestas, menos aún colocar la solución recién extraída del refrigerador.

En la mayor parte de experimentos lo que se mide es el cambio en la tensión del tejido, producto de contracciones o movimientos especiales que son registrados a través de una palanca isotónica en un kimógrafo o más directo, a través de un oscilógrafo. La amplitud que generalmente se selecciona para la palanca isotónica es aquella que magnifica 5 a 7 veces el tamaño del movimiento y el peso de la palanca debe estar usualmente entre 0,5 y 1,0 g. Si la respuesta del tejido es muy rápida; tal como, la contracción del músculo cardiaco, debe utilizarse una palanca mucho más liviana.                                                                                   .

La cantidad de droga necesaria para producir una respuesta en la mayor parte de experimentos es generalmente muy pequeña, entre 10mg o menos. La muestra debe prepararse a concentraciones bastante diluidas, recomendándose el incremento gradual de las concentraciones.

Los experimentos farmacológicos pueden ser cualitativos y cuantitativos, los primeros para demostrar la actividad o efecto existente y los segundos para determinar la concentración ideal a la que se produce el mejor efecto.

Entre los experimentos de órgano o tejido aislado más conocidos se pueden mencionar a los siguientes:

·         Experimentos   en músculo liso intestinal: íleon de Cavia porcellus, íleon de Rattus rattus y yeyuno de Oryctolagus cunniculus; los cuales son utilizados para medir el movimiento o reflejo peristáltico. En estos experimentos se pueden utilizar sustancias patrones contrácturantes como acetilcolina, histamina y cloruro de bario y relajantes como atropina, antihistamínicos, adrenérgicos y otros.

·         Experimentos en músculo cardiaco: aurícula aisladas de Cavia porcellus o Oryctolagus cunniculus, corazón aislado o perfundido de Buffus spinolosus y O. cunnlculus, utilizados para evaluar ritmo cardiaco y trabajo de corazón.

·         Experimentos en músculo esquelético: preparaciones en nervio frénico diafragmático de Rattus rattus, útiles para ensayar agentes bloqueadores neuromusculares y drogas que afectan la unión neuromuscular; músculo abdominal recto de Buffus spinolosus, para demostrar la hidrólisis de acetilcolina por la colinesterasa y para demostrar las acciones de compuestos como ésteres de colina y otros, también para diferenciar el modo de acción de algunos agentes bloqueadores neuromusculares; músculo gastrocnémico de B. spinolosus, para evaluar sustancias relajantes y contracturantes musculares.

·         Experimentos en tejido uterino: útero de Rattus rattus y de Cavia porcellus, para determinar el comportamiento del tejido uterino frente a determinadas sustancia estimulantes como oxitocina, ergotamina, prostaglandinas o relajantes como salbutamol y ritodrina.

·         Experimentos en tejido traqueal: cadena traqueal de Cavia porcellus, para determinar el comportamiento del tejido traqueal frente a determinadas sustancia broncodilatadoras tales como salbutamol, teofilina y otros; o broncoconstrictoras como acetilcolina, histamina y leucotrienos.

·         Otros tejidos: nervio ciático de Buffus spinolosus, vesícula seminal de Rattus rattus, vaso deferente de Cavia porcellus, y otros.            .

·         Estudios de actividad antimicrobiana, antimicótica, antiviral y antiparasitaria, que pueden realizarse utilizando diversas técnicas in vitro y con un sinnúmero de agentes patógenos, en los cuales se analiza no sólo actividad, sino también concentración mínima inhibitoria.

·         Acción sobre radicales libres: en las que existe un alto número de técnicas para la generación de radicales libres en diversos tejidos (microsomas hepáticos, eritrocitos, leucocitos, tejido cerebral, etc.)

2) Estudios "in vivo", denominados así a todos aquellos en que se utiliza el animal completo, sin quitarle la vida. Las ventajas de estos estudios en relación a los de órgano aislado son: a) la respuesta es global, es decir no responde un solo sistema u órgano, sino el organismo como un todo. b) permite cuantificar dosis con mayor precisión ya que la sustancia está sometida a todo el proceso ADME (Absorción, Distribución, Metabolismo y Excreción). c) Se pueden observar reacciones adversas inmediatas, sobretodo aquellas de comportamiento u observables a los sentidos. d) Posibilita detectar efectos adversos mediatos y endógenos, mediante técnicas auxiliares. e) Permite evaluar diversos parámetros y sistemas al mismo tiempo. Encierra también algunas desventajas y entre ellas se puede mencionar: a) requieren mayor presupuesto b) requieren ambiente especial para mantener los animales y personal auxiliar para atenderlos. c) La sociedad protectora de los animales y algunas disposiciones gubernamentales que restringen el uso de animales para experimentación.

Para los estudios en grupos de animales, debe tenerse en. cuenta que el método debe contener requisitos de alta exigencia científica, como: garantizar que los animales pertenezcan a una sola especie, observando característica homogéneas en todo lo posible (variedad, edad, sexo, alimentación, medio ambiente, y si fuera posible, animales de la misma camada). Otro aspecto importante es el número de animales de experimentación, para lo cual debe tenerse en cuenta las exigencias estadísticas de muestreo (recomendable trabajar con más de seis animales, siendo la respuesta más confiable cuanto mayor sea el número de estos). El método empleado para la investigación debe estar estandarizado.

Es recomendable utilizar anestesia cuando hay que emplear cirugía en el animal de experimentación, más aún, si la prueba es limitante y puede causar dolor profundo o muerte del animal; no es necesario utilizar anestesia cuando se trata de medir la sensibilidad, el comportamiento del animal o los efectos cuantificables en forma inmediata (Ej.: analgésicos, sedantes) o en forma mediata (Ej.: hipolipemiantes, hipoglicemiantes).

Dentro de las vías de administración utilizadas con mayor frecuencia están: vía intraperitoneal (usada casi exclusivamente a nivel experimental), vía intramuscular, vía endovenosa, vía intradérmica, vía subcutánea, vía oral, vía rectal, vía inhalatoria, vía intratecal y otras de menor uso. Los animales de experimentación que se utilizan con mayor frecuencia en nuestro medio son: Canis familiaris (perro), Orycytolagus cunniculus (conejo), Cavia porcellus (cobayo), Buffus spinolosus (sapos), Rattus rattu (rata), Mus musculus (ratón), Felinus domesticus(gato) y otros que esporádicamente podrían utilizarse.

El libro editado por el Programa Iberoamericano de Ciencia y Tecnología para el Desarrollo (CYTED), el Screening Methods on Pharmacology de Turner, el PharmaqoJogical studies on intact preparations de la Universidad de Edimburgo, la Farmacología Experimental de Velásquez, y otros, compendian una gran cantidad de métodos y técnicas estandarizadas para estudios farmacológicos in vivo, dentro de las cuales se pueden mencionar:

·         Actividad antiinflamatoria: de las técnicas más utilizadas son edema plantar por carragenina y edema auricular, menos frecuente, medición de la actividad de la ciclo-oxigenasa. Se realizan generalmente en ratas y ratones albinos.

·         Actividad analgésica: Se puede mencionar a la analgésica química, analgesia térmica: como el foco calorífico, la placa caliente y la jaula algesiométrica; y finalmente la analgesia mecánica. Los animales utilizados son ratas y ratones albinos.

·         Actividad antipirética: con métodos como: hipertermia inducida por levadura de cerveza o inducida por endotoxina E. coli.

·         Actividad anticonvulsivante: utilizando métodos como el del pentilentetrazol yestricnina, en ratones albinos como animales de experimentación generalmente.

·         Actividad inmunomoduladora, mediante recuentos celulares y fórmulas leucocitarias utilizando ratas albinas.

·         Actividad Antiagregante plaquetaria, mediante agentes agregantes en ratas o conejos.

·         Actividad gastroprotectora: con métodos de producción de úlcera gástrica aguda inducida mediante inmovilización y frío (o por stress), ligadura de píloro, etanol absoluto, ácido acético, indometacina y otros. El animal de experimentación más utilizado es la rata albina.

·         Actividad antidiarreica: en animales con tránsito intestinal normal y otro con tránsito intestinal acelerado.

·         Actividad cardiovascular: en la que puede evaluarse sustancias con efecto sobre el ritmo cardiaco y la presión arteria!. En estas técnicas generalmente se utilizan animales como: perro, conejo, cobayo y rata:

·         Actividad diurética: en la que se evalúa la diuresis tanto como la concentración de electrolitos excretados.

·         Actividad Hipoglicemiante: en la que se evalúa la glicemia mediante técnicas con sustancias químicas hiperglicemiantes como estreptozotocina y haloxano, u otras como la evaluación de: consumo periférico de glucosa, absorción intestinal de glucosa; ya nivel pancreático la evaluación de la liberación de insulina. En la actualidad también se utilizan ratas diabéticas genéticamente preparadas.

·         Actividad Hipolipemiante: en estos estudios se evalúan los niveles de colesterol, lipoproteínas y triglicéridos en los animales de experimentación sometidos previamente a un proceso hiperlipemiante. Se prefiere utilizar al conejo como animal de experimentación.

·         Actividad he pato protectora en hepatocito de animales de experimentación y/o dosaje detransferasas (GPT y GOT).

DOSIS EFECTIVA 50 (DE ₅₀):

Se define como la dosis que va a ejercer un efecto en el 50% de los animales en estudio. Las unidades en que se expresa son g, mg/kg. , y sus valores dependen de la vía de administración.

Cuando la respuesta es del todo o nada, también llamada respuesta cuántica y esta conduce a la muerte, la DE₅₀ se convierte en Dosis Letal para el 50% de los animales (DL₅₀)'

Algunas veces se requiere encontrar la DE₁₀ DE₇₅ DE₉₉ por mencionar una dosis, con el objeto de conocer la dosis que afecta a la mayor parte de animales para alcanzar la dosis efectiva mínima más cercana. Estas dosis son calculadas aritmética y. gráficamente.

Para determinar el efecto de una sustancia en estudio debe utilizarse diferentes grupos de animales a los que se les administrará diferentes concentraciones en progresión geométrica.

TOXICIDAD DE LAS PLANTAS MEDICINALES

Así como las plantas tienen el potencial curativo de ciertas dolencias y enfermedades, también poseen el potencial de producir daño, toxicidad y muerte. Por lo tanto, es de vital importancia desarrollar estudios que permitan determinar los efectos tóxicos y las dosis. correspondientes.

Dosis tóxica:- Es la cantidad de droga que puede producir daño permanente o pasajero en el individuo, el grado de toxicidad guarda relación con la naturaleza de la droga administrada, y ésta puede presentarse en forma: aguda, sub-aguda y crónica. Una sustancia potencialmente supra-tóxica necesitará concentraciones muy pequeñas para producir daño, incluso, muerte. Los ensayos preliminares pueden realizarse en Artemia salina, pero también se utilizan animales de mayor complejidad como ratones o ratas.

Estudios de plantas medicinales con toxicidad comprobada

a.          Pruebas de toxicidad sistémica

Las pruebas de toxicidad sistémica se refieren a alteración de la fisiología, anatomía (macro o microscópica) o química clínica (incluyendo hematología) que resulta de cambios patológicos en cualquier órgano distante del sitio en el cual se ha administrado un medicamento herbario.

1.      Las pruebas de toxicidad aguda ayudan a determinar las manifestaciones tóxicas, de la prueba de la sustancia, que ocurren cuando se expone a los animales a una o más dosis dentro de un período de 24 horas.                                                                                   

2.      Las pruebas de toxicidad de largo plazo ayudan a determinar las reacciones tóxicas cuando los animales son expuestos a un tratamiento prolongado. En tales pruebas, los animales son observados en cambios de conducta así como manifestaciones anatómicas, fisiológicas y bioquímicas del daño tisular. Si los cambios patológicos se detectan durante el período de administración de la droga, y los cambios no son serios, puede ser posible determinar si tales cambios son reversibles después que la droga se retira. Así, las observaciones se hacen a períodos durante la administración continua de la droga y luego, a intervalos después que la droga ha sido retirada para determinar si tal patología es reversible.

b.          Las pruebas de toxicidad local se hacen para determinar la irritación local y/o la absorción sistémica de una medicina herbal usada para aplicaciones locales (tales como inhalantes respiratorios, drogas aplicadas a la piel o mucosa).

c.          Los requerimientos regulatorios para las pruebas de toxicidad especial varían entre los estados miembros de la OMS. Para medicamentos herbarios que contienen hierbas usadas comúnmente que han sido usadas clínicamente por largo período de tiempo, algunos países pueden no requerir pruebas especiales. Las pruebas de mutagenicidad, sin embargo, son requeridas comúnmente. Si se contemplara cualquier desviación del uso tradicional (tal como un nuevo uso, nueva preparación, nueva ruta de administración o administración más prolongada), las pruebas de toxicidad adicional tales como carcinogenicidad, teratogenicidad y estudios de la reproducción pueden recomendarse.

PREPARADOS DE PLANTAS MEDICINALES

Luego de estandarizarse el cultivo (lugar, altitud, clima, tipo de suelo;. etc.), recolección (época del año, técnicas empleadas y otros) y conservación (planta verde, secado, fotosensibilidad, almacenamiento); deberán practicarse las mejores formas de uso y preparación de las plantas medicinales para extraer los principios activos y garantizar el efecto: de éstas. (1)

La efectividad de las plantas una vez cosechadas depende del modo de prepararlas; no es igual una infusión a un cocimiento, porque del tiempo de exposición a altas temperaturas de una parte o partes vegetales dependerá la pérdida o conservación de sus principios activos(1).

En forma similar a los medicamentos químicos, los preparados con plantas medicinales pueden ser administrados por vía oral, vía tópica (a través de la mucosa oral), vía local a través de la piel o por vía inhalatoria.

En la mayor parte de casos la planta es empleada en forma seca, lo que posibilita contar en cualquier momento con el insumo. Esto implica que el proceso de secado se realice de manera apropiada, por ejemplo, las plantas medicinales aromáticas no deben ser expuestas al sol.

A.    De administración Oral            

            Infuso (Tisana)

Es un preparado en el que se extrae los principios medicinales de una planta mediante agua hirviendo o muy caliente. Se prepara vertiendo agua caliente en la cantidad indicada para cada caso al recipiente que contiene la droga (parte de la planta a utilizada) y dejándola reposar, tapado, durante 10 a 15 minutos. Cuando la temperatura puede llegar a alterar los principios activos contenidos en la droga, o contenga aceites esenciales (como el caso de eucalipto, yerba luisa, etc.) se indicará agua muy caliente o moderadamente caliente, pero sin llegar a hervir.

Cocimiento (Decocción)

Es un preparado en el que se extrae los principios medicinales de una planta mediante agua a temperatura de ebullición. El tiempo de cocción será de 15 a 20 minutos, si se trata de flores, hojas o raíces tiernas, y de 30 a 40 minutos, si se trata de raíces duras leñosas o cortezas. La desventaja de este procedimiento es que se puede perder los aceites esenciales, compuestos volátiles o la destrucción de algunos fitoconstituyentes de las plantas medicinales.                                                                                                   '

Macerado

Consiste en tener en contacto prolongado la droga con un líquido frío o caliente (agua, vino, vinagre" aceite, alcohol, éter, etc.). Una maceración en agua fría se obtiene vertiendo sobre determinada porción de la planta, una cantidad adecuada de agua y dejándola reposar de 12 a 24 horas. Las maceraciones en vino se preparan de manera similar pero se deja reposar durante 10 a 15 días. Se recomienda que el vino sea tinto, si las propiedades de la planta son astringentes y vino blanco cuando son diuréticas. La ventaja de la maceración es que se aumenta la acción extractiva y la obtención de una mayor concentración de principios activos.

Extracto crudo

Es la obtención del extracto sin hacer uso de solventes y a temperatura ambiente. Se puede utilizar extractor eléctrico o rallador; el extracto obtenido debe ser filtrado. La ventaja es que se puede aprovechar una mayor cantidad de principios activos en forma natural e inalterada.

Extracto fluido

Se obtiene por la extracción de los principios activos de las diferentes partes de la planta con alcohol, manteniendo una relación constante entre el peso de la droga y el extracto (un centímetro cúbico de extracto fluido corresponde a un gramo de droga)

Extracto alcohólico.

Se obtiene de dos maneras: 1° El zumo exprimido de la planta se añade a la misma cantidad, en peso, de alcohol de 90 grados, y se deja reposar durante varios días. Se hierve y se filtra. Se conserva en botella oscura con cuentagotas. 2° Una cantidad de la planta fresca con igual peso de alcohol de 95 grados se pone en maceración de ocho a quince días y transcurrido el tiempo se filtra y se conserva de igual manera. Los extractos alcohólicos se administran por gotas.

Jarabe

Se obtiene disolviendo 180 gramos de azúcar en 100 mililitros de agua. A este jarabe se le añade los principios activos en forma de infusión, cocimiento, maceración o zumo.

Tintura

Son soluciones hidroalcohólicas. Se obtiene macerando en alcohol, de adecuada graduación, una cantidad de planta seca y desmenuzada (lo usual es que el peso de la planta sea el 20% del peso del alcohol), durante el tiempo suficiente para permitir que los principios activos pasen de la planta al alcohol. Después se filtra y se añade alcohol de Alcohol misma graduación hasta llegar al peso inicial.

Zumo

Es la parte líquida de un vegetal fresco. Se obtiene mediante la presión o estrujamiento de partes vegetales frescas. Se conserva poco tiempo y en refrigeración en recipientes de vidrio. En esta forma se emplea aquellas plantas que pueden perder parte o toda su actividad medicinal con el secado.

Aceite medicinal

Se prepara disolviendo los principios activos de la planta en aceite. Generalmente de

oliva.

Esencia

Llamado también aceite esencial o volátil, son de olor intenso que se extrae de las plantas por diversos procedimientos como por ejemplo mediante arrastre de vapor de agua. Requiere procedimientos de laboratorio.

Mezclas (precauciones)

Las plantas se puede emplear individualmente o asociadas con otras de propiedades análogas. Con fines prácticos, la cantidad para cada planta se fija de modo que la mezcla dé un total de 100 gramos. Hay que tener cuidado de no asociar plantas con propiedades antagónicas.

B.         De administración tópica en la mucosa oral:

Gargarismos, colutorios                                                          .

Líquido empleado para gárgaras, que consiste en mantener el líquido en la garganta y agitarlo por la contracción del velo del paladar y la acción del aire espirado Se utiliza las infusiones o cocimientos mezclados con glicerina (1:1)

C.                   De administración local en la piel:

       Emplasto, cataplasma, pomada, crema.

Cataplasma

Preparado que se obtiene machacando una o varias partes de plantas frescas hasta formar una masa blanda, muchas veces adicionando polvos o harinas u otros elementos, especialmente aplicadas en las inflamaciones superficiales de la piel. Generalmente se prepara en caliente y pocas veces en frío.

Emplasto

Preparado a base de sustancias reblandecidas por el calor y luego esparcidas sobre un paño para ser aplicado.

Pomada o ungüento

Preparación blanda de uso externo. compuesta de uno o más extractos vegetales mezclados con grasa animal o vaselina.

D.         De administración por vía inhalatoria:

Inhalaciones

Consiste en aspirar el vapor procedente de la infusión o conocimiento de plantas medicinales o aspirar el aroma restregando plantas aromáticas o también de las maceradas en alcohol.

Baños:

Consiste en la inmersión total o parcial del cuerpo en un medio líquido o gaseoso con fines terapéuticos.

REFERENCIAS BIBLlOGRAFICAS

1.      Plantas Medicinales: cultivo  importancia y formas de uso. (2000). Instituto de Medicina Tradicional. Essalud. Iquitos-Perú; pp: 17-23

2.      Guía de plantas de uso medicinal. (1997). Servicio de Medicinas Pro-vida. Lima; pp: 11, Screening Methods in Pharmacology: (1965). R. Turner. Academic Press. New York, EE.UU.

3.      Pharmacological Experiments on Intact Preparations. (1970). Staft of Depa tment of Pharmacology, University of Edimburgh. The Williams & Wilkins Company. Gran Bretaña.

4.      Pharmacologícal Experiments on Isolated preparations. (1968). Staft of Department of Pharmacology, University of Edimburgh. E& S. Livinstone Ud. Edimburgh, Gran Bretaña.

5.      Manual de Técnicas de Investigación. (1995). Programa Iberoamericano de Ciencias y Tecnología para el Desarrollo - CYTED.

6.      Plantas de Uso Medicinal en Guatemala. Armando Cáceres. Editorial Universita'ria. Guatemala. s/a

7.      Chimica e Farmacologia Delle Piante Medicinali. M. Pedretti. Erboristeria Domani-Libri. Milano, Italia.

8.      Farmacología. A. Velásquez, P. Lorenzo, J. Serrano, F. Andrés- Trelles. (1996). 16e;d. Ed. Interamericana McGraw-Hill. Madrid, España.